Aurore-Cécile VALFORT

En résumé

Entreprises

• Université Claude Bernard Lyon 1 - Ingénieur biotechnologie

  Villeurbanne cedex 2013 - maintenant Etude de la jonction neuromusculaire du nématode C. elegans par la caractérisation de mutants des récepteurs post-synaptiques cholinergiques et GABAergiques:
  
  *Identification et caractérisation de mutants des récepteurs GABAergique ou cholinergique:
  
  - Planification d'un crible
  - Mutagénèse chimique à l'EMS
  - Crible visuel au macrozoom
  - Identification, caractérisation et enregistrement des mutants
  - Fixation et immunomarquage de nématode
  - Microscope Spinning disk
  - Extraction et purification d'ADN génomique pour séquençage complet du génome
  
  
  *Transgénèse de nématode:
  
  - Réalisation de clonages par restriction enzymatique classique et multi-fragmentaire par GIBSON, Gateway.
  - Microinjection de gonade de nématodes
  - Insertion unique de transgène de façon ciblée par les techniques: CRISPR, Co-CRISPR, MosSCI et MosTIC.
  
  
  *Encadrement de stagiaire
  
  
  

• CNRS - Ingénieur biotechnologie

  Paris 2010 - 2013 Étude de la diversité du fuseau mitotique au sein de plusieurs espèces de nématodes.
  
  *Microscopie DIC et analyse statistique
  - Réalisation de films en microscopie DIC de la première division de mitose de l'embryon chez plus d'une centaine de souches de nématodes.
  - Utilisation d'un algorithme (développé par nos collaborateurs de l'Université d'Harvard) permettant de suivre la position des centrosomes au cours du temps et de quantifier de nombreux paramètres.
  - Analyse statistique en utilisant Matlab
  
  *Mise au point de techniques de transgénèse
  - Adapation d'une technique de transgénèse (MosSCI) pour l'insertion d'une copie unique de transgène dans le génome.
  - Développement d'une nouvelle technique de transgénèse (TALEN) pour l'insertion de copie unique de transgène.
  - Insertion multi-copies de transgènes par bombardement de nématodes
  - Microinjection de gonade de nématode.
  
  *Expertise en biologie moléculaire
  - Mise au point de la production d'ARN pour la microinjection de nématodes.
  - Extraction et purification d’ADN génomique, synthèse d’ADNc, extraction d’ARN, RT-PCR
  - Clonage par restriction enzymatique et Gateway.
  
  - Congélation et enregistrement dans une base de données de chacune des souches de nématodes étudiées
  
  *Travaux scientifiques
  - Réalisation de deux posters présentés lors de congrés scientifique.
  - Publication d'un article scientifique. Deuxième article en cours d'écriture
  
  *Encadrement
  Encadrement d'un stagiaire de M1 (1 mois) et un stagiaire ESTBB 2ème année (4mois)

• Inserm - Ingénieur biotechnologie

  PARIS 13 2010 - 2010 Prédiction du domaine d’interaction de deux protéines par co-transfection des protéines tronquées en système eucaryote et Co-Immunoprécitation
  
  - Culture cellulaire: Transfection de plasmide et de siRNA,
  - Biochimie: Co-immunoprécipitation, électrophorèse SDS-PAGE, Western Blot
  - Biologie moléculaire: Clonage multi-fragmentaires par digestion enzymatique et Gateway, mutagénèse dirigée
  

• Institut de Recherche en Biotechnologie- Centre National de Recherche Canada - Stagaire Ingénieur biotechnologie

  2009 - 2009 Production de vecteurs lentiviraux pseudotypés dans le but d'étudier leur stabilité.
  
  - Culture cellulaire: transfection transitoire pour la production de lentivirus et transduction de lentivirus
  - Construction plasmidique
  - Electrophorèse SDS-Page, Western Blot
  - Gestion stock, entretien matériel
  - Lab meeting
  - Cahier de laboratoire, rapport, exposé oral

• CNRS - Stagiare - Technicien de laboratoire

  Paris 2007 - 2007 Expression et phosphorylation de la paxilline durant la différenciation ostéoclastique.
  
  - Electrophorèse, Western- Blot
  - Initiation culture cellulaire
  - Redaction cahier laboratoire et rapport

• INSA Lyon - Stagiaire - Technicien de laboratoire

  Villeurbanne Cedex 2007 - 2007 Etude de l'influence d'un régime enrichi en acide docosahéxaenoïque sur la composition en acide gras du bismonoglycérophosphate
  
  - Extraction liquide/liquide
  - Chromatographie: HPLC, CPG, CCM, CCM-2D
  - Redaction cahier de laboratoire, rapport, exposé oral

Formations

• Université Strasbourg 1 Louis Pasteur

  Strasbourg 2007 - 2009 Master Biotechnologie et Innovaions thérapeutiques

• Université Lyon 1 Claude Bernard

  Villeurbanne 2004 - 2007 Licence biochimie

Réseau

• Adeline MERGOUD

• Amandine BUGNICOURT, PHD

• Fanny TURLURE

• Laure SAPEY-TRIOMPHE

• Lydia FAUQUE

• Manon LEBUIS

• Ségolène ARLOTTO

• Taran LIMOUSIN

• Véronique RAGNETTI

• Wallis NAHABOO