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Mollet CHLOÉ

CHATENAY-MALABRY

En résumé

Hello,
Doctor in Sciences and graduated in bio-engineering from the University of Technology of Compiègne, I am looking for new opportunities in the field of biotechnologies applied to health (cell culture, cell/protein/gene therapy, virology, cancerology, immunology...).
I chose to follow a professional training oriented towards industry through a DUT, an engineering school and an industrial Ph.D to meet the requirements of the work environment.
I devote myself fully to what I do with dynamism and autonomy. Furthermore, my adaptability and my enthusiasm allow me to easily integrate a new team.
If you are interested by my profile, please feel free to contact me at the following address: chloe_mollet@hotmail.fr

Docteur en Sciences et diplômée Ingénieur en Génie Biologique de l'Université Technologique de Compiègne (UTC), je suis à la recherche de nouvelles opportunités dans le domaine des biotechnologies appliquées à la santé (culture cellulaire, thérapie cellulaire/protéique/génique, virologie, cancérologie, immunologie….).
J’ai choisi de suivre une formation professionnalisante tournée vers l’industrie (DUT, école d’ingénieur et thèse CIFRE) dans l’objectif de répondre aux mieux aux exigences du monde du travail (techniquement et en gestion de projet / travail en équipe).
C'est avec dynamisme et autonomie que je m'investis dans les activités qui me sont confiées. De plus, mes capacités d'adaptation et ma bonne humeur facilite mon intégration au sein d'une nouvelle équipe.
Si mon profil vous intéresse, n'hésitez pas à me contacter à l'adresse suivante : chloe_mollet@hotmail.fr

Mes compétences :
Virologie
Culture cellulaire
qrtPCR
Biotechnologies
ELISA
Western Blot

Entreprises

  • LATOXAN SAS (et CNRS - UMR 7274 Institut de Chimie Radicalaire - Equipe CROPS) - Thèse CIFRE R&D en Biotechnology

    2014 - 2018 Ma mission principale est d'identifier et caractériser de nouvelles molécules bioactives à visée thérapeutique ou cosmétique à partir de venins d'animaux.

    - manipulation de venins, de toxines animales
    - screening pharmacologique (bactériologie : travail en conditions stériles, manipulation de souches pathogènes et non pathogènes, criblage en milieu liquide/solide, culture cellulaire, flux calcique intracellulaire (FlexStation))
    - purification des molécules actives par HPLC (préparative, semi-préparative et analytique)
    - caractérisation physicochimique (LC/MS, MALDI TOF, Séquençage)
    - caractérisation pharmacologique au moyen de peptides synthétiques (détermination de la CMI (test de dilution en milieu liquide), CMB, test d'hémolyse, test de perméabilisation, test de cytotoxicité)

    Je participe également à d'autres projets :
    - purification de protéines à partir de venins d'animaux (HPLC, FPLC)
    - analyse de venins et de molécules de plantes par HPLC analytique
    - manipulation de toxines d'origines végétales
    - préparation de molécules pour la vente

    Missions liées à ses activitées :
    - rédaction de rapports analytiques et expérimentaux en français et en anglais
    - communication/ reporting régulier
    - respect des délais
    - encadrement de stagiaires (BTS 1ère/2ème année, M1, M2) et d'un technicien

  • Institut de Recherche en Cancérologie de Montpellier (IRCM) - Ingénieur d'étude

    2014 - 2014 Caractérisation du lien fonctionnel entre TIF1β et UHRF1 au niveau de la chromatine.

    Culture cellulaire (ECS), transfection , extraction d'ARN, transcription inverse, qrtPCR , western blot , ChIP .

  • Sanofi - Stagiaire ingénieur

    Paris 2013 - 2013 Caractérisation de fibroblastes cardiaques humains pour étudier les mécanismes de l'insuffisance cardiaque.

    Identification de biomarqueurs et gènes d'intérêts impliqués dans la fibrose cardiaque

    Culture cellulaire (flask) - Prolifération cellulaire - Différenciation cellulaire- extraction d’ARNm - transcription inverse - qrtPCR - ELISA - Western Blot (utilisation de la GBox et de SallySue) - FLIPR (étude des flux calcique en temps réel par fluorescence)

  • UMR Génie Enzymatique et Cellulaire (UTC-CNRS) - Assitant de Recherche

    2012 - 2012 Etude de la stabilité de la protéine STAT5B impliquée dans le mécanisme de la leucémie.

    - Production et purification de la protéine recombinante STAT5B
    - Developpement et optimisation de techniques analytiques permettant de suivre l'évolution de la protéine STA5B au cours du temps : Western-Blot et ELISA (+ Electrophorèse)

  • Valneva (ex Vivalis) - Stage Assistant Ingénieur

    Roussay, 2011 - 2012 La société:
    Stage de 6 mois au sein de la société VIVALIS Nantes spécialisée dans la production de virus et de protéines recombinantes ainsi que dans la recherche et développement de molécules thérapeutiques.

    Mes Missions:
    Contribution au développement du procédé de production de vaccins grippaux sur la lignée EB66®
    Evaluation des performances de milieux chimiquement définis sur la croissance cellulaire et les productivités virales

    - Culture cellulaire: cellules adhérentes et en suspensions (flask, spinner) >> cellules MDCK, cellules aviaires EB66®
    - Culture Fed-Batch à l'échelle erlenmeyer.
    - Suivi du métabolisme cellulaire.
    - Quantification et titrage des virus produits.
    - Rédaction de rapports expérimentaux
    - Meetings / LabBook en anglais

  • Food Sciences Australia, CSIRO - Stagiaire Technicien

    2010 - 2010 Prévention des dommages dus au froid par des technologies innovantes (Ultrasons, traitement thermique,…) dans le cas de la tomate.
    Travail en laboratoire de physique-chimie.
    Découverte du fonctionnement d’une industrie de biotechnologies

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