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Claire LECROISEY-LEROY

LYON

En résumé

Je suis docteur en biologie, j’ai acquis de solides compétences en biologie moléculaire et cellulaire au cours de mes dix années d’expérience en tant que chargée de projets en laboratoire de recherche. J’ai récemment travaillé à l’optimisation d’une technique révolutionnaire permettant de modifier les génomes d’êtres vivants. Ce challenge particulièrement motivant m’a permis de confirmer que l’innovation est un domaine qui me tient particulièrement à cœur. Créative, motivée et enthousiaste, j’aime résoudre des problèmes.
J’ai également d’excellentes capacités de communication. J’ai régulièrement présenté mes résultats devant des experts scientifiques en congrès international, j’ai enseigné à l’Université de Lyon pendant 4 ans et j’ai également participé à des événements de médiation scientifique.
Aujourd’hui, je cherche de nouveaux défis à relever dans lesquels mon expertise scientifique ainsi que ma capacité à communiquer et à former du personnel contribueront à la réalisation de projets innovants. Je suis particulièrement intéressée par les biotechnologies, la médecine, l’environnement et l’industrie pharmaceutique.

Mes compétences :
Génétique
Biologie
Biologie cellulaire
Enseignement universitaire
Biologie moléculaire
Gestion de projet
Veille technologique
Ingénierie génomique
Transgénèse
Formation
Communication
Recherche scientifique
Supports de communication
Support technique
Rédaction scientifique

Entreprises

  • Centre de Génétique et de Physiologie Moléculaire et Cellulaire (CGPhiMC) - Chercheur

    2013 - 2015 Gestion d'un projet de recherche sur la régulation de l’excitabilité cellulaire par l’étude de canaux potassiques.
    Méthodes développées:
    • Optimisation du protocole d'ingénierie génomique CRISPR-Cas9
    • Génération de lignées transgéniques
    • Clonage par recombinaison homologue
    • Recombinaison de fosmide
    • Crible génétique
    • Analyse par Whole Genome Sequencing
  • Institut de Génomique Fonctionnelle de Lyon - Chercheur

    2011 - 2013 Gestion d'un projet de recherche sur la diversification de familles de protéines (récepteurs nucléaires d’hormone et insulines).
    Méthodes développées:
    • Tests pharmacologiques sur embryons
    • Biologie moléculaire (clonage, suivi d'expression génique par qPCR)
    • Embryologie (optimisation du protocole de fécondation in vitro, caractérisation de phénotypes, hybridation in situ)
    • Evolution moléculaire (analyses de séquences)

    Publication de deux articles scientifiques.
    Mise en place d’une animalerie, formation et coordination d'une équipe technique de quatre personnes.
    Gestion appel d'offre pour l'équipement du laboratoire.

  • CGPhiMC - Doctorante

    2006 - 2010 Gestion d’un projet sur l’étude des mécanismes de la dégénérescence du muscle chez un modèle animal de la Myopathie de Duchenne.
    Méthodes développées:
    • Biologie moléculaire (clonage, extraction-purification d'ADN/ARN)
    • Génétique, micro-injection et transgénèse
    • Culture cellulaire
    • Microscopie confocale (live cell imaging, IHC)
    • Microscopie électronique
    • Biochimie (expression et purification de protéines et d'anticorps, interactions moléculaires)

    Publication de quatre articles scientifiques.
    Encadrement de 5 stagiaires.
    230 heures d’enseignement universitaire.
    Médiation scientifique pour le Téléthon.
  • Centre de Génétique et de Physiologie Moléculaire et Cellulaire - Stage de Master 2

    2005 - 2006 Caractérisation de protéines impliquées dans les mécanismes de dégénérescence du muscle chez un modèle animal de la Myopathie de Duchenne.
    Méthodes développées:
    • Clonage
    • Expression et purification de protéines et d'anticorps
    • Micro-injection et génération de lignées transgéniques
    • Immuno-marquages et microscopie confocale
    • Expression et purification de protéines et d'anticorps
    • Participation à un crible par ARN interférents
  • Laboratoire de Biologie Moléculaire et Cellulaire (LBMC), ENS Lyon - Stagiaire (Master 1)

    2005 - 2005 Etude moléculaire sur l'origine des vertébrés, clonage de FGFs (Fibroblast Growth Factors).
    Méthodes développées:
    • Biologie moléculaire (clonage, extraction-purification d'ADN/ARN, PCR, RT-PCR)
    • Analyse de séquence
    • Manipulation de bases de données (Genbank, Uniprot, Bases de données de génomes, Protein Data Bank...)
  • DIMAR (Diversité, évolution et écologie fonctionnelle marine), Centre d'Océanologie de Marseille - Stagiaire (Licence)

    2004 - 2004 Etude de la phylogéographie d'espèces d'éponges méditerranéennes.
    Méthodes développées:
    • Extraction et purification d'acides nucléiques
    • Mise au point de tests PCR sur séquences microsatellites
  • Institut Pasteur, Paris - Assistante technique

    Paris 2003 - 2003 Expression et purification de protéines du toxoplasme.
    Méthodes développées:
    • Transfection bactérienne
    • Expression bactérienne en fermenteur
    • Purification sur colonne d'affinité
    • Western Blot

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