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Clara SALAZAR CARDOZO

Paris

Electionseuropéennes 2024

RETROUVEZ GRATUITEMENTLe résultat des européennes à Lille ainsi que le résultat des européennes dans le Nord.

En résumé

Mes compétences :
RT-qPCR
Tests de migration
ImageJ
CFX384
GraphPad Prism4
Tests de toxicité ATP-lite et MTS
Western Blot
ImageLab
ELISA
ARN interférence
Culture cellulaire (primaires + lignées)

Entreprises

  • CNRS - Ingénieur d'études en Biologie Cellulaire et Moléculaire

    Paris 2015 - maintenant UMR8199 Génomique Intégrative et Modélisation des Maladies Métaboliques dirigée par le Pr.Phillippe Froguel.

  • Pierre Fabre - Ingénieur d'études stagiaire

    Castres 2014 - 2014 Unité de Service et de Recherche 3388 CNRS-Pierre Fabre
    Pharmaco-Chimie de la Régulation Epigénétique du Cancer ETaC dirigée par le Dr.Paola Arimondo
    Equipe de Criblage Pharmacologique

    Sujet : Identification de cibles impliquées dans la transition épithélio-mésenchymateuse pour le développement de nouveaux modulateurs épigénétiques dans le cadre de la lutte contre le cancer.

    Techniques expérimentales : Culture cellulaire, ARN interférence (lipofection), test de migration (technologie Platypus), test de toxicité ATP-lite One Step, extractions d'ARN, RT-qPCR, extraction et dosage de protéines, western blot.

    Maitrise des formats de plaques 384 puits.

  • INSERM U837 - Chargée de mission R&D stagiaire

    2013 - 2013 INSERM UMR837, Equipe 4 - Ciblage Cellulaire et Moléculaire pour le Traitement des Cancers dirigée par le Dr.Marchetti, sous la direction du Dr.J.Kluza

    Sujet : Influence du métabolisme dans la résistance des mélanomes aux inhibiteurs de BRAFV600E.

    Techniques expérimentales : Culture cellulaire, traitements cellulaire, tests de viabilité MTS, cytométrie en flux (marquage IP : test de viabilité et cycle cellulaire).

  • CNRS - Chargée de mission R&D stagiaire

    Paris 2012 - 2012 CNRS UMR8161, Equipe Initiation des Cancers Epithéliaux du Pr.Corinne Abbadie, sous la direction du Dr.O.Pluquet

    Sujet : Etude du stress du réticulum endoplasmique dans la sénescence et l'échappement néoplasique de kératinocytes cutanés normaux humains.

    Techniques expérimentales : culture de cellules primaires (kératinocytes et fibroblastes), ARN interférence (lipofection), extraction d'ARN, RT-qPCR, extraction et dosage de protéines, western blot, cytométrie en flux (marquages lysotracker et H2DCFDA).

    Publication : Identification of a gene signature of a pre-transformation process by senescence evasion in normal human epidermal keratinocytes. Molecular Cancer, 2014

Formations

  • USTL Lille 1

    Villeneuve D'Ascq 2013 - 2014 Master 2 Génie Cellulaire et Moléculaire

    Mention Bien

Réseau

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