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Franceline GUILLOT

LANCIÉ

En résumé

Jeune ingénieur en biotechnologie diplômée de Polytech Marseille, mes différentes expériences m’ont apporté des connaissances dans les domaines de l’immunologie, de la biologie cellulaire et de la biologie moléculaire. Elles m’ont permis de développer ma rigueur, mon organisation et mon autonomie.

Je souhaiterai trouver un poste en recherche et développement dans le domaine de la santé, au sein d'une société pharmaceutique ou biotechnologique.

Mes compétences :
Cytométrie en flux
Biologie cellulaire
Immunologie
ELISA
Culture cellulaire
Biologie moléculaire

Entreprises

  • Centre de Recherche de Cancérologie de Lyon - INSERM U1052 - CNRS UMR5286 - Ingénieur de recherche

    2014 - maintenant Equipe : Ciblage thérapeutique de la tumeur et de son environnement immunitaire

  • Hospices Civils de Lyon - Hôpital Edouard Herriot - Technicienne de laboratoire médical

    2014 - 2014 Service : Pathologies moléculaires des hémoglobines

    J'ai réalisé le phénotypage des hémoglobines et le dosage de l'hémoglobine glyquée.
    De plus, j'ai effectué la cytologie de divers liquides de ponction humains.

    Techniques acquises :
    - HPLC
    - Electrophorèse capillaire
    - Cytologie

  • Innate Pharma - Assistante ingénieur R&D

    Marseille 2013 - 2013 Mon travail a consisté à mettre au point les protocoles nécessaires à la caractérisation fonctionnelle in vitro d’anticorps monoclonaux thérapeutiques en développement et dirigés contre une cible immunothérapeutique. J'ai travaillé selon la norme ISO 9001.

    Techniques acquises :
    - Culture cellulaire : Lignées cellulaires et cellules primaires humaines (sans antibiotique), Isolation de PBMC à partir de sang humain, Purification de monocytes, Différentiation in vitro de macrophages, Clonage par dilutions limites, Travail en zone de confinement L2
    - Cytométrie en flux : FACSCanto II, Cytomètre haut débit, Marquage multicouleurs
    - Test fonctionnel in vitro : Phagocytose de lignées tumorales par activité d'ADCP
    - ELISA

    Logiciels maîtrisés:
    - FlowJo, Diva
    - GraphPad

    Autres compétences acquises :
    - Analyse, interprétation et présentation des résultats
    - Gestion des stocks et des commandes des réactifs de laboratoire

  • CNRS - Laboratoire de chimie bactérienne - Assistante de recherche

    2012 - 2012 Au sein de l’équipe de M. Barras, ma mission a permis d’identifier un ARNnc d’E. coli régulant l’expression de l’opéron suf, qui intervient dans la biogenèse des protéines Fer-Soufre, et de déterminer comment cet ARNnc régule l’expression de suf en partenariat avec ses régulateurs transcriptionnels.

    Techniques acquises :
    - Génétique bactérienne : Transformation d'ADN plasmidique, Electroporation, Transduction, Mutagénèse dirigée, Construction de fusions traductionelles par recombinaison homologue
    - Biologie moléculaire : PCR, Purification d’ADN, Electrophorèse
    - Dosage de l’activité B-galactosidase grâce à un lecteur de microplaque (TECAN)

    Autres compétences acquises :
    - Rédaction du cahier de laboratoire
    - Recherche bibliographique

  • BIOMNIS - Technicienne de laboratoire médical

    LYON 2011 - 2011 J'ai effectué les analyses médicales permettant de mettre en évidence les gammapathies monoclonales. J'ai participé à la réalisation du mode opératoire des immunofixations sériques dans le cadre de l’accréditation COFRAC selon la norme ISO 15189.

    Techniques acquises : Immunoélectrophorèse, Immunofixation

  • Hospices Civils de Lyon - Centre de Biologie Sud - Assistante technicienne de laboratoire médical

    2010 - 2010 Au sein du service d'auto-immunité, j'ai réalisé les analyses médicales afin de détecter les anticorps anti-ADN natif dans du plasma humain et les anticorps anti-nucléaire sur des coupes histologiques de foies humains. La présence de ces anticorps permet de détecter respectivement le lupus érythémateux disséminé et l’hépatite auto-immune.

    Techniques acquises : Elisa, Immunofluorescence

  • Hospices Civils de Lyon - Hôpital Edouard Herriot - Assistante technicienne de laboratoire médical

    2009 - 2009 Au sein du service de pharmacologie spécialisée, mon projet a permis de rédiger un protocole pour mettre en évidence la mutation 118 A > G sur le gène OPRM1 (Opioid Receptor Mu 1) humain.
    Cette mutation est associée à une altération de la fonction clinique des opioïdes. Les patients la détenant nécessitent une concentration en morphine plus importante pour soulager la douleur. J’ai recherché cette mutation sur 104 patients drépanocytaires, susceptibles de recevoir des opioïdes au cours de leur traitement contre les crises drépanocytaires. Ceci permet de savoir si la morphine utilisée aux posologies usuelles est capable de soulager les douleurs induites par ces crises.

    Techniques acquises :
    - Biologie moléculaire : PCR, Electrophorèse, Méthode FRET, Digestion enzymatique

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