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Amélie LE CORF

CORBEIL ESSONNES

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Entreprises

  • I-stem - Ingénieur d'étude

    CORBEIL ESSONNES 2013 - maintenant Travail sur la Progéria et le syndrome progéroïde Nestor & Guillermo / CDD 1 an

    BIOLOGIE CELLULAIRE :
    Cellules souches mésenchymateuses et fibroblastes ; Effet de différents traitements sur les cellules ; Criblage d'une banque d'environ 3000 composés ; Transformation de cellules par lipofection et nucléofection (système Amaxa) ; Utilisation de différents formats pour la culture cellulaire : des flacons de culture 225cm2 jusqu'aux plaques 384 puits

    BIOCHIMIE/BIOLOGIE MOLECULAIRE :
    qRT-PCR (technologie Sybergreen et Taqman) ; Marquages immuno-fluorescents ; Utilisation d'automates (laveurs de plaques, dispenser) ; Analyse des marquages cellulaires à l'aide d'un "ArrayScan™ XTI High Content Analysis (HCA) Reader" (Thermoscientific) et de Microscopes à fluorescence (Zeiss, Nikon) ; Western Blot (système Biorad)

    GESTION :
    Discussion, mise en place et suivi des projets et protocoles ; Analyse et mise en forme des résultats ; Gestion des commandes et stocks

    PARTICIPATION A LA VIE DU LABORATOIRE :
    Organisation de visites pour les personnes extérieures ; Participation à l'opération "1000 chercheurs dans les écoles" ; Aide à la mise en place du Téléthon des salariés de l'AFM/Généthon ; Co-responsable de la bonne tenue et de la fonctionnalité de la "paillasse" commune Western-Blot du laboratoire
  • CHU Poitiers - Ingénieur hospitalier

    Poitiers 2009 - 2013 Travail au sein de l'unité INSERM U935 "Modèles Cellules Souches Malignes et Thérapeutiques" / CDDs

    BIOLOGIE CELLULAIRE :
    Culture de cellules adhérentes et en suspension en milieu liquide et semi-solide (méthylcellulose) ; Re-programmation cellulaire pour génération d'iPSC porcines ; Culture dans des conditions d'auto-renouvellement et de différenciation, des cellules ES murines : différenciations endothéliale et hématopoïétique ; Culture primaire et établissement de lignées à partir de tissus porcins : Foetus (fibroblastes embryonnaires), liquide amniotique (amniocytes), foies foetaux, moelle osseuse (cellules mésenchymateuses), embryons ; Transformation cellulaire par infection rétrovirale, lipofection et électroporation (utilisation de si-RNA) ; Tri de cellules par système de billes magnétiques couplées à un anticorps

    BIOCHIMIE/BIOLOGIE MOLECULAIRE :
    RT-PCR ; Marquages immuno-histochimiques et immuno-fluorescents ; Cytométrie de flux: FACS Canto II et VERSE : entretien, réglages, marquages, analyse (Diva 6 et FACSuite) ; Western Blot et extraction protéique

    AMPLIFICATION DE PLASMIDES :
    Transformation bactérienne et extraction d'ADN Plasmidique

    GESTION :
    Discussion, mise en place et suivi des projets et protocoles ; Analyse et mise en forme des résultats ; Gestion des commandes et stocks

    PARTICIPATION A LA VIE DU LABORATOIRE :
    Encadrement technique d'étudiants en License et Master à l'Université de Poitiers
  • CHU Poitiers - Stagiaire

    Poitiers 2007 - 2009 Etudiante en Master 1 et Master 2 à l'Ecole Pratique des Hautes Etudes / Stage effectué au laboratoire d'Hématologie et Oncologie Biologique, CHU Poitiers

    Sujet : « Etude de l'interaction entre des cellules souches embryonnaires murines en différenciation endothéliale et des cellules souches cancéreuses de gliomes humains »

    Directeurs de stage : Pr. Ali Turhan et Dr. Lucie Karayan-Tapon

    BIOLOGIE CELLULAIRE :
    Culture, dans des conditions d'auto-renouvellement et de différenciation, de cellules ES murines : différenciations endothéliale et hématopoïétique ; Culture primaire de cellules de gliomes humains ; Technique de co-culture (Transwell

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