Yannick VALOGNE

En résumé

Entreprises

• Cellectis - Assistant Ingénieur

  Paris 2011 - maintenant Dérivation de lignées de fibroblastes primaires humains à partir de biopsies cutanées.
  Production de lignées de cellules iPS de haute qualité à partir de fibroblaste, pré-adipocytes et PBMC.
  Contrôle qualité.
  Élaboration de procédures standardisées et de dossier. de lot.

• Inserm U935 "Modèles de cellules souches malignes et thérapeutiques" - Ingénieur d'études

  2008 - 2010 Activités principales:
  Développer et valider des protocoles de différenciation hématopoïétique in vitro à partir de lignées de cellules ES et iPS.
  Assurer le rôle de référent dans les techniques d'extraction des acides nucléiques, RT-PCR et qPCR. Former de nouveaux utilisateurs à ces techniques.
  Mise en forme des résultats et présentation.
  Soutien logistique (entretien des appareils, gestion et commande du consommable).
  
  Compétences techniques:
  Biologie cellulaire: Culture de lignées de cellules souches embryonnaires (ES) humaines et de cellules pluripotentes induites (iPS) humaines et murines. Différenciation hématopoïétique in vitro. Culture primaire de fibroblastes embryonnaires murins. Cytométrie en flux.
  Biologie moléculaire: Extraction d'ARN, RT, PCR quantitative en temps réelle pour la quantification relative des niveaux d'expression de marqueurs de pluripotences et de marqueurs de l'hématopoïèse.
  Expérimentation animale: Sacrifice de souris et récupération de la moelle osseuse des fémurs et tibias. Isolement de fibroblastes embryonnaires murins.

• Inserm U785 « Physiopathogenèse et traitement de l'hépatite fulminante et du cancer du foie » - Assistant en techniques biologiques

  2006 - 2008 Activités principales: Prise en charge expérimentale de divers projets de recherche. Mise en place et/ou optimisation de protocoles. Mise en forme des résultats et présentation. Soutien logistique. Formation et support techniques auprès d'étudiants.
  
  Techniques mises en œuvre:
  Biologie cellulaire: Culture cellulaire (diverses lignées de cellules immortalisées et transformées).
  Transfection transitoire. Cytométrie en flux. Immunofluorescence. Microscopie 2D.
  Biologie moléculaire: RT-PCR, PCR quantitative en temps réel (quantification absolue). Clonage et sous-clonage.
  Biochimie: Western blot, immunoprécipitation.

• Inserm U370 « Carcinogenèse hépatique et virologie moléculaire » - Assistant en techniques biologiques

  2003 - 2006 Activités principales: Prise en charge expérimentale d'un projet de recherche (caractérisation d'un variant d'épissage de la cycline A humaine). Mise en place et/ou optimisation de protocoles. Support logistique. Mise en forme des résultats et présentation.
  
  Techniques mises en œuvre:
  Biologie cellulaire: Culture cellulaire (diverses lignées de cellules immortalisées et transformées). Transfection transitoire. Cytométrie en flux (étude du cycle cellulaire). Immunofluorescence. Microscopie 2D, vidéomicroscopie.
  Biologie moléculaire: RT-PCR. Sous-clonage.
  Biochimie: Western blot, test d'activité kinase (manipulation de 32P), immunoprécipitation.
  Conception de figures pour publication.

• Inserm - Stagiaire

  PARIS 13 2002 - 2003 Laboratoire « Plasticité Cellulaire et Thérapie » (Inserm U421, Hôpital Henri Mondor, Créteil).
  Recherche d'un marqueur de pluripotence dans le modèle des cellules souches neurales formant des
  neurosphères.

Formations

• Ecole Pratique Des Hautes Etudes

  Paris 2003 - 2007 Recherche médicale

• Ecole Supérieure Des Techniques De Biologie Appliquée (ESTBA)

  Paris 2002 - 2003 Certificat d'études
  
  spécialisées technologiques en Recherche Biomédicale.
  Option Immunologie, mention Bien.
  ESTBA (Ecole Supérieure des Techniques de Biologie Appliquée), Paris.

• Institut Universitaire De Technologie

  Limoges 2000 - 2002

Réseau

• Ali AYOUAZ

• Aurélie BERLAND

• Cellectis SA

• Claire RIFFAT

• Emilie GROYER

• Maelot NDJA

• Marion DARNAUD

• Mathilde GIRARD

• Raffy DEMIRDJIAN

• Sophie PERILLOUS