Aurélie DARBOIS DELAHOUSSE

En résumé

Entreprises

• Institut Curie, Inserm U932 Immunité et Cancer, O.Lantz - Ingénieur d'Etudes, Recherche fondamentale

  PARIS 5 2014 - maintenant Equipe Olivier LANTZ : Lymphocyte CD4, Immunité Innée et Cancer
  
  - Participation aux projets de recherche de l'équipe principalement sur une sous population du système immunitaire, les MAIT.
  - Mise en place et suivi de modèles expérimentaux chez le petit animal.
  - Suivi et genotypage de l'élevage de souris transgénique du laboratoire.
  - Analyse phénotypique de population du système immunitaire
  - Préparation de plasmides et production de lentivirus en Laboratoire L3

• Galapagos - Associate Scientist ( Ingénieur)

  2010 - 2013 Département : Sciences Translationnelles
  Responsables : Delerive P., Comas D., Dupont S., Pujuguet P.
  
  - Recherche et suivi de biomarqueurs ex vivo en oncologie et sur des modèles d’osthéoarthrites
  - Etude des mécanismes d’actions dans des chondrocytes de rats nouveaux nés
  - Test d’activité de produits sur lignées cellulaires, tissus, cellules sanguines ou sang total (humain, rongeur)
  - Techniques utilisées : prélèvements d’échantillons sur rongeurs (tissus, sang), isolation de cellules sanguines, cytométrie de flux (BD Canto), qRTPCR (SyberGreen, Taqman, Viia7 96 et 384 puits), SuperArray, Elisa, AlphaLisa et HTRF (Envision), extraction de protéines, Western Blot, culture cellulaire
  

• Inserm U894 Eq 7 Centre de Phychiatrie et de Neuroscience - Biologie et physiopathologie du neurone - Ingénieur d'études en Biologie

  2008 - 2010 Site de l'hôpital Saint Anne, Paris, France.
  Responsable : C. Néri. - N.Offner
  
  - Validation de cibles thérapeutiques contre la dégénérescence du neurone dans le cadre de la maladie de Huntington.
  - Modèles utlisés : culture primaires de neurones striataux d'embryons de souris après dissection, lignées cellulaire de neurones striataux de souris, C.elegans.
  - Techniques utilisées : test de drogues, transfection de siRNA, de plasmides, qRTPCR sybergreen, PCR, purification de plasmides, Western Blot, coimmunoprécipitation, test de mort cellulaire, immunofluorescence sur cellules, microscopie à fluorescence, lecteur de plaques 96p, expérimentation animale,
  - Référent Santé, Hygiène et Sécurité de l'équipe.

• Sanofi-aventis -  Ingénieur - 9 mois - Stage de fin d'études

  Paris 2007 - 2007 Chilly-Mazarin, France
  Recherche Amont, Département Cardiovasculaire, Groupe Biochimie
  Responsable : A. Jagerschmidt
  
  - Caractérisation d’outils pour l’étude d’un GPCR d’intérêt cardiovasculaire et premières études fonctionnelles.
  - Mise au point d'un modèle cellulaire par transfection de siRNA par electroporation
  - Techniques utilisées : culture primaire, western blot, cytométrie en flux, extraction ARN, qRT-PCR Taqman, PCRarray, transfection de siRNA, test de prolifération cellulaire
  - Mise au point et rédaction de protocoles utilisables par l'équipe de recherche

• Inserm U773 Eq 11 - Ciblage radioisotopique de récepteur tumoraux - Stagiaire Ingénieur - 6 mois

  2006 - 2006 CHU Xavier Bichat, Paris, France
  Responsable : D. Pélaprat A. Gruaz-Guyon
  
  - Evaluation de l'affinite de peptides radioactifs sélectifs de récepteurs tumoraux.
  - Test de ciblage in vivo chez la souris nude porteuse d'une tumeur
  - Techniques utilisées : culture en lignée, marquage radioactif, liaison sur membrane, liaison sur cellules, autoradiographie sur tissus

• CNRS - UMR 8015 Cristallographie et RMN Biologiques - Technicien - 2 mois

  2005 - 2005 Faculté de pharmacie de Paris V, Paris
  Responsable : S. Grizot
  
  - Expression, purification et cristallisation de protéines impliquées dans la pathogénicité bactérienne
  - Techniques utlisées : culture bacterienne, chromatographie d'affinité, test de protocoles de cristallisation

• Laboratoire d'analyses médicales - Technicienne de laboratoire

  2004 - 2004 Le Raincy, France
  Responsable : Dr. Duchenne
  
  - Travail dans un environnement stérile : service Bactériologie
  - Identification, Tri et Ensemencement des prélèvements

Formations

• ENVA

  Maisons Alfort 2015 - 2015 Experimentation animale_Niveau 1
  
  Apprentissage de la réglementation sur la conduction et le suivi de projet utilisant le petit animal, Diplome d'expérimentation animale niveau I

• Université Paris 6 Pierre Et Marie Curie UPMC

  Paris 2002 - 2007 Biologie
  
  Master Professionnel : R&D en Biotechnologies
  Master 1 : Biologie moléculaire et cellulaire, Spécialité : Du gène au médicament.
  Deug et licence de Sciences de la Vie