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Céline CARPENTIER

Talence

En résumé

Mes compétences :
Electrophorèses sur gel d'agarose et d'acrylamide
Culture cellulaire:transfections,siRNA,immunofluo
Biochimie:WesternBlot,Extraction-dosage protéines
Clonage:Techniques InFusion, Gateway, Par Ligation
Biologie Moléculaire: RT-PCR, extraction ARN/ADN
Ingénieur
Enseignement
Recherche
Bibliographie
Coordination de projets
Recherche clinique

Entreprises

  • CHU BORDEAUX - Attachée de Recherche Clinique

    Talence 2015 - maintenant Depuis Mars 2016: Attachée de Recherche Clinique – CIC Cardiologie – CHU Bordeaux
    Novembre 2015 - Février 2016 : Attachée de Recherche Clinique – Service Urologie 80% et CIC Cardiologie 20% – CHU Bordeaux
    Juin - Octobre 2015 : Attachée de Recherche Clinique – CIC Cardiologie – CHU Bordeaux
    Janvier - Mai 2015 : Stagiaire Attachée de Recherche Clinique – Service Urologie – CHU Bordeaux
  • Faculté de Médecine Henry Warembourg - Lille - Monitrice en Biochimie et Biologie Moléculaire

    2010 - 2013 • 2 ème année de PACES: Travaux pratiques de Biochimie (Spectrophotométrie, Dosage d’une activité enzymatique, Electrophorèse)

    • 1ère année de PACES: Travaux Dirigés de Biologie Moléculaire (Acides nucléiques, chromatine, réplication, mutation et instabilité de l’ADN, organisation et évolution des gènes humains)

    • Master UE « Gènes, génome, biomolécules concepts et méthodes d’étude »: Travaux pratiques de Biologie Moléculaire (Extraction ADN génomique, PCR, digestion enzymatique, gel agarose)
  • Inserm - Gestion d'un projet de recherche dans le cadre d'un doctorat

    PARIS 13 2010 - 2013 •Management:
Travail
 en 
équipe 
(40
personnes) 
et 
encadrement 
de 
personnel 
(technicien,
stagiaires)


    •Compétences techniques:
 Utilisation
 de
 techniques
 de
 laboratoire
 dans
 différents
 domaines:
 ,

    Biologie
 Moléculaire
 (clonages,
 RT‐PCR,
 extraction
 ARN/ADN
 à
 partir
 de
 cellules
 et
 tissus,

    électrophorèses
 en
 gel
 d’agarose
 et
 d’acrylamide),
 Culture
 cellulaire
 (transfections,
 immuno‐
    fluorescence,
siRNA),
Bioinformatique 
(analyse 
de
 séquences, 
design
 de 
primers)


    •Communication 
de
 résultats:
 3
 publications 
scientifiques,
 9 posters,
 2 communications
 orales, 
rapports

    d’activité, 
animation 
de 
réunions (présentation de résultats ou d'articles scientifiques; encadrement de stagiaires.


    •Bioinformatique: Analyse de séquences, design de primers (Primer3), utilisation de Banques de données (Expasy), Création de cartes plasmidiques (MacVector)
  • Inserm - Stagiaire

    PARIS 13 2008 - 2010 Apprentissage
 des
 techniques
 de
 laboratoire:
 Biochimie 
(Immuno‐empreintes,
 Extraction
 et
 dosage
 de

    protéines),
Microscopie
 à 
fluorescence.


Formations

  • Ecole Doctorale De Biologie Santé De Lille 2

    Lille 2010 - 2013 Doctorat

    Biologie Moléculaire - Etude de la régulation de l’épissage alternatif de Tau normal et dans la Dystrophie Myotonique de type 1.
  • Université Lille 2 Droit Et Sante

    Lille 2009 - 2010 Rédaction d'un mémoire "Développement de minigènes comme outils moléculaires pour l’étude de l’épissage alternatif de Tau" suite au stage de 10 mois et écriture d’un projet de recherche pour demande de bourse de thèse

    Obtention de la mention bien
  • Université Lille 1 Sciences Et Technologies (Lille)

    Lille 2008 - 2009 Master 1 Biologie et Biotechnologies option Génétique et Microbiologie - Obtention de la mention Bien

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