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Géraldine TEPPAZ

NANTES

Electionseuropéennes 2024

RETROUVEZ GRATUITEMENTLe résultat des européennes à Nantes ainsi que le résultat des européennes en Loire-Atlantique.

En résumé

Je suis titulaire d'un BTS et d'un master 2 en Biotechnologies. J'ai occupé pendant 18 mois le poste de responsable d'étude au sein du département analytique biologie des laboratoires pharmaceutiques VIRBAC. Au cours de cette mission j'ai développé des méthodes analytiques de contrôle des vaccins vétérinaires: ELISA, titrage, dosages protéiques, dosage endotoxines, contrôle inactivation, en accord avec les exigences de la Pharmacopée Européenne. Ces méthodes ont été mises en application lors du contrôle de 3 lots pilotes de ce vaccin. J'ai pour celà formé et encadré une équipe de 3 technciennes.

Depuis février 2010, j'occupe le poste d'ingénieur d'étude au sein de l'unité Cytokines et récepteurs en Immunocancérologie (UMR U892, NANTES). Je travaille sur le développement d'immunocytokines (anti marqueur CD20/GD2) couplées à l'IL15 et j'évalue leur potentiel thérapeutique. J'ai ainsi produit et purifié ces molécules et j'ai évalué leur caractéristiques in vitro. J'évalue actuellement leur activité in vivo dans des modèles de cancer développés chez la souris.
Si mes compétences vous intéressent n'hésitez pas à me contacter. Je suis dynamique, motivée, autonome, et rapidement opérationnelle dans un nouvel environnement.
Je suis à l'écoute des opportunités qui peuvent m'être offertes dans toute la France.

Mes compétences :
Biologie
Biologie moléculaire
Biotechnologies
Culture
Culture cellulaire
Diagnostic in vitro
ELISA
FACS
Industrie pharmaceutique
PCR
Protéines
Protéines recombinantes
Purification
Purification de protéines
QPCR
Transfection
Western blot
Management

Entreprises

  • Centre de Recherche en Cancérologie de Nantes - Equipe cytokines et récepteurs en immuno-oncologie- - Ingénieur d'étude

    2010 - 2015 Production d’immunocytokines recombinantes thérapeutiques (anti marqueur CD20-Rituximab), couplées à l’IL15 et évaluation de leur activité biologique in-vitro et in vivo.

    Culture cellulaire, transfections en cellules CHO, purification sur protéine A, ELISA, gel SDS-PAGE, tests de prolifération cellulaire, FACS, tests ADCC CDC et apoptose, expérimentation animale niveau I (contention, greffe IV et sous cutanée, traitement thérapeutique IP, pharmacocinétique, sacrifice).

  • AFSSA Ploufragan - Virologie pathologie aviaire et cunicole - Ingénieur d'étude

    2009 - 2010 Mise au point de test ELISA pour différencier les canards infectés des canards vaccinés par les sours types N4 et N9 de virus Influenza aviaire.

    Clonage, suivi de la production de proteines recombinantes en baculovirus, analyse de l'expression de la protéine recombinante par western blot, extrcation de protéines recombinantes, purification et mise au point du protocole de dosage ELISA

  • VIRBAC - Développement analytique biologie - Stagiaire ingénieur d'étude

    2007 - 2007 Développement d'outils et de méthodes analytiques permettant de contrôler les vaccins vétérinaires.

    PCR-RFLP, qPCR, clonage, Western blot, expression d'une protéine recombinante et production d'un immunosérum polyclonal

  • VIRBAC - Développement analytique biologie - Ingénieur d'étude

    2007 - 2009 Développement de méthodes analytiques permettant de contrôler le développement industriel d'un vaccin vétérinaire.

    Tests ELISA, méthode de contrôle d'inactivation du vaccin, titrages, qPCR, PCR-RFLP, rédaction de protocoles,travail sous les référentiels BPF/BPL, encadrement de 3 techniciens, rédaction de rapports, validation de méthodes analytiques selon les VICH.

  • CisBio International & IGF de Montpellier - Stagiaire

    2006 - 2006 Etude des voies de signalisation des RCPG de la vasopressine et étude de la dimérisation de ces récepteurs par la technique de FRET.

    Culture cellulaire, transfection, dosage HTRF®,caractérisation de ligands (liaison).

  • Laboratoire Océanologique de Villefranche sur mer - Stagiaire

    2002 - 2002 Etude du développement embryonnaire de l’oursin par la technique de l'hybridation in situ. Criblage d’une banque d’ADNc, PCR, clonage, synthèse de sondes moléculaires.

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