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Maxime TENON

PARIS

Electionseuropéennes 2024

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En résumé

Volontaire, motivé et curieux je suis aujourd'hui à l'écoute de nouvelles opportunités professionnelles. Fort des bases acquises lors de mon BTS et à la suite de deux stages en cours de formation je me suis spécialisé à l'aide d'une licence professionnelle en Biotechnologies. Cette spécialisation m'a permis de renforcer mes connaissances et mes capacités techniques sur mes plus grands centres d'intérêts que sont la biologie cellulaire, la biologie moléculaire et l'immunologie, mais aussi d'en découvrir de nouveaux comme la microscopie. Cette formation à été effectuée en alternance et j'ai eu le privilège de travailler chez L'Oréal en Recherche Avancée.
Mon expérience au CEA à Saclay dans le service SIMOPRO et l'équipe du Dr Bernard MAILLERE m'a permit de découvrir de nouvelles techniques en culture cellulaire sur des cellules extraites de sang humain mais aussi l'utilisation de la cytométrie et la complétion de mes connaissances en biologie moléculaire par des typages HLA.
Aujourd'hui à l'hôpital Saint-Antoine, en recherche, au sein de l'équipe du Professeur MOHTY je continue à exercer mes compétences en culture cellulaire sur sang de patients atteints de GVH et en cytométrie par des marquages 13 couleurs. J'exerce aussi des techniques classiques comme les extractions ADN/ARN, PCR, qPCR et ELISA quantitatif. Enfin je suis actuellement en formation en animalerie pour expérimenter sur des souris.

Mes compétences :
Microbiologie
Biochimie
Biologie végétale
Biologie cellulaie
Mathématiques
Biologie animale
OpenOffice
Physique
Chimie
Microsoft Office
Biologie moléculaire
Microscopie confocale
Biologie cellulaire
Culture cellulaire
Microscopie
Microscopie optique
Microscopie electronique
Laboratoire de Recherche
Génétique
Biologie
Techniques de laboratoire
Sciences du vivant
Biotechnologies végétales
Biotechnologies

Entreprises

  • AP-HP Saint Antoine - Technicien de laboratoire

    2018 - maintenant Technicien de laboratoire au sein de l'équipe Mohty de la faculté de l'hôpital Saint-Antoine. Equipe axée sur l'étude des populations cellules lors des GVHD après transplantation de cellules souches.
     Cytométrie en flux 13 couleur (Cytoflex Beckman Coulter, marquages de surface et intracellulaires, marquages pSTAT, Test ALDEFLUOR, Trucounts Beckman)
     Extraction de PBMC « Peripheral blood mononuclear cells » de poches de sang humain (Ficoll)
     Culture cellulaire (Culture d’organoïdes à partir d’intestins de souris, culture de PBMC, DC, entretien de lignées myéloïdes, Tri cellulaires magnétiques)
     Expérimentation animale (Souris BalbC, Entretien, pesées, Gavage, IV, IP, sacrifice, dissection)
     ELISA Quantitatif (Qiagen et Quantikine kits)
     Biologie moléculaire (Extraction ADN, ARN, PCR et qPCR SYBR Green)
     Gestion des commandes et des stocks du laboratoire, mise en place de protocoles

  • CEA Saclay - Technicien de laboratoire

    Gif-sur-Yvette 2016 - 2018 CDD au CEA de Saclay – SIMOPRO, équipe de Bernard MAILLERE (1 an + renouvelé 6 mois)
    « Détermination de l’immunogénicité de molécules thérapeutiques en collaboration avec Novartis suivie d’un mapping des épitopes des lymphocytes T »
     Extraction des PBMC « Peripheral blood mononuclear cells » de poches de sang humain (Ficoll, adherence et différenciation des DC « Cellules dendritiques » par adhérence »
     Culture cellulaire (Culture des PBMC, tri magnétique LT « Lymphocyte T » CD4, chargement des DC avec les molécules thérapeutiques, stimulation avec des LT CD4)
     Cytométrie de flux (Comptage de cellules et discrimination de population mixtes, vérification phénotypique des populations cellulaires par immunomarquage)
     Immunologie (ELISPOT Interféron gamma– mesure d’immunogénicité, mapping d’épitopes)
     Biologie moléculaire (Extractions ADN, typage HLA)
     Analyse et mise en forme des résultats

  • L'Oréal - Technicien de laboratoire

    PARIS 2015 - 2016 En recherche avancée à L'Oréal j'effectue une mission en apprentissage. Je travaille sur l'élaboration d'une nouvelle méthode d'étude pour mon laboratoire en culture cellulaire et transcriptomique, étude menée aussi par des marquages immunologiques, des ELISA et de la microscopie à fluorescence.

  • Muséum National d'Histoire Naturelle - Technicien de laboratoire

    Paris 2014 - 2015 « Extraction et dosages de toxines de cyanobactéries à partir de biofilms prélevés dans le Tarn »
    -Biologie cellulaire et moléculaire (PCR, extraction d'ADN, extraction sur gel)
    -Biochimie, techniques de spectrométrie

  • CNRS - Technicien de laboratoire

    Paris 2014 - 2014 «  Caractérisation d'un facteur de régulation chez Medicago truncatula  »
    -Biologie cellulaire et moléculaire (PCR, qPCR, extraction d'ADN)
    -Microbiologie (Culture bactérienne, PCR sur colonies)
    -Chromatographie en phase gazeuse

  • GRTgaz - Gestionnaire de données, secretaire

    Bois-Colombes 2013 - 2013 Gestion de données, comptabilité, mise en forme de documents, programmation sur excel.

Formations

  • ETSL (Ecole Technique Supérieure Du Laboratoire)

    Paris 2015 - 2016 Licence professionnelle Industries Chimiques et Pharmaceutiques (ICP)

    Cette spécialisation en option Biotechnologie me permet d'approfondir mes connaissances en biologie cellulaire, moléculaire et en immunologie tout en développant mes compétences pratiques dans mon entreprise, L'Oréal. J'y ai découvert de nouveaux centres d'intérêts comme la microscopie électronique. Il s'agit d'une expérience gratifiante et elle apporte une touche finale parfaite à ma formation.

  • ETSL

    Paris 2013 - 2015 BTS Bioanalyses et Contrôles

  • Université Paris 7 Denis Diderot

    Paris 2011 - 2013 Validation de la biologie des métazoaires, des microorganismes, des organismes végétaux, de la biologie cellulaire et moléculaire.

Réseau

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