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Mélanie CHENON

PARIS

Electionseuropéennes 2024

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En résumé

Je suis Ingénieur d'études et durant mes années d'expériences j'ai pu acquérir de nombreuses compétences:

• Préparation d’ADN, Extraction ADN, ARN, PCR, RT-PCR, QPCR, Clonage moléculaire, élaboration des stratégies de clonage (clonage traditionnel par enzyme de restriction, ligation), Mutagenèse dirigée, clonage par GATEWAY, Clonage par méthode SLIC, Electrophorèse, séquençage (ABI PRISM)

• Culture de procaryotes : Cultures bactériennes, transformations, productions de protéines recombinantes. Culture eucaryotes : Culture de Levure, transformations, production de protéines recombinantes

• Dénaturation et renaturation de corps d’inclusion. Dialyse, ultrafiltration tangentielle et frontale, diafiltration. Chromatographie sur colonne ou en batch : échangeuse d’ions (Q, SP, DEAE, CM) affinité (Heparin, GST, His), interaction hydrophobe (Phenyl), phase inverse (Jupiter C4, C18, Atlantis HILIC), exclusion stérique (Superdex 75 et 200, Sephacryl S100 et S200). Appareillages FPLC, AKTÄ Purifier. Programmation sur Unicorn.

• Electrophorèse SDS-PAGE, Western-blot, Immunoprécipitation, Formation de complexe protéiques par Pull Down, sur GF Analytique… Caractérisation des paramètres cinétiques d’une enzyme, Spectroscopie UV, Dichroïsme circulaire, Spectroscopie de Fluorescence, Tests d’activités polymérase (P32), Fabrication de sonde, Biacore, utilisation et maintenance du spectrofluorimètre.

• Cristallogenèse manuelle ou à l’aide de robot (Utilisation du robot TECAN ), technique de la goutte assise, technique de la goutte suspendue, Screen des conditions de cristallogenèse etc…

• Mac et PC, Windows, Word, Excell, Power Point, Internet, Utilisation de divers sites spécialisés (Swissprot, Infobiogen, NPSA, DNA Stryder, Serial Cloner…) Divers logiciels de bio-informatique (Blast, ClustalW, ProtParam, Alignement de séquences)

• Anglais Scientifique (Lu, écrit et parlé)

Mes compétences :
Purification
Biologie moléculaire
Biochimie
Biologie

Entreprises

  • LEBS CNRS - Ingénieur d'études

    2011 - maintenant
    Ingénieur d’études en Biologie Moléculaire et Biochimie, Laboratoire d’Enzymologie et Biochimie Structurales (LEBS)- UPR 3082 CNRS- Gif sur yvette (91)- www.lebs.cnrs-gif.fr
    Missions :
    • Clonage de tous les nouveaux construits du laboratoire, par biologie moléculaire classique (PCR/ enzyme de restrictions), mutagénèse dirigée ... Installation de la stratégie SLIC au laboratoire.
    • Mise au point de procédés de purification de protéines recombinantes, issues de productions procaryotes pour des études bio-structurales (cristallographie, AUC, DC …).
    • Pull down et analyse d’interactions protéiques puis formation de complexes protéiques pour leurs études (MST, ITC, MALS …).
    • Cristallogenèse de macromolécules biologiques
    • Encadrement d’un étudiant en Master 2 recherche
    • Responsable des achats, et des stocks du laboratoire (Lab Manager)

  • CNRS - Ingénieur d'étude

    Paris 2006 - 2010 Ingénieur d’études en Biologie Moléculaire et Biochimie au sein de l’équipe de virologie moléculaire dirigée par le Dr. Isabelle JUPIN, Institut Jacques Monod, CNRS, Paris (75)
    Missions : - Caractérisation de l’activité Ubiquitine Hydrolase de la protéase du TYMV et de sa structure. (Collaboration avec Eq . S.Bressanelli (Gif sur Yvette))
    - Expression, purification et caractérisation de l’activité de la polymérase du TYMV
    - Criblage d’une banque de souches mutantes de levures pour caractériser une enzyme impliqué dans la phosphorylation de la polymérase du TYMV.

Formations

  • Université Henry Poincaré/ Institut National De Polytechnique De Lorraine (Vandoeuvre Les Nancy)

    Vandoeuvre Les Nancy 2004 - 2005 DESS Génie protéique

Réseau

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