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Carine BOCQUIER

MARCY-L'ETOILE

Electionseuropéennes 2024

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En résumé

Diplômée d'un master 2 professionnel en Diagnostic Microbiologique, je possède également un master 2 recherche en « Génétique, Développement et Immunité ».
Je recherche un premier poste où je pourrai mettre à profit mes compétences en biologie cellulaire et moléculaire. Je souhaite intégrer un projet de R&D qui peut aussi bien étudier le domaine de la santé humaine ou animale que l'industrie alimentaire ou l'environnement.

Mobilité nationale, disponible immédiatement.

Mes compétences :
Biologie moléculaire
Biologie cellulaire
Microbiologie
Immunologie
Cancérologie
Diagnostic in vitro
Biotechnologies
Recherche scientifique
Génétique

Entreprises

  • BioMérieux - Attachée de Recherche Biosciences (6 mois, stage)

    MARCY-L'ETOILE 2014 - 2014 Laboratoire d’accueil : bioMérieux Marcy l'Etoile, R&D Industry
    Équipe de Patrice Chablain « Molecular Biology Food »

    Développer une méthode de détection des Entérobactéries dans les poudres de lait infantiles par PCR en temps réel.

    - Mettre au point le pré-traitement des échantillons afin d’éliminer l’obtention de faux-positifs dus à la détection du génome des bactéries mortes.
    - Optimiser le mix PCR pour la détection des Entérobactéries et d’un contrôle interne d’amplification.

  • Institut de Recherche sur le Cancer et le Vieillissement - Ingénieur d’Études en Biologie Cellulaire et Moléculaire (6 mois, stage)

    2011 - 2011 Équipe de Gilles Pagès « Angiogenèse normale et pathologique » - Nice

    Étudier la régulation de l’activité du facteur télomérique TRF2 par les MAP Kinases.

    Missions :
    - Étude du statut de phosphorylation du facteur télomérique TRF2 sur le résidu sérine XXX dans des lignées de cellules normales et cancéreuses (voie des MAP Kinases ERK constitutive active).
    - Étude du rôle de cette phosphorylation dans un contexte de surexpression de formes mutantes de TRF2. Analyse de l’impact de la surexpression de formes non phosphorylables de TRF2 sur la prolifération, l’activation des voies de réponses aux dommages de l’ADN, l’induction de l’apoptose et de la sénescence.

    Techniques utilisées :
    Culture cellulaire, immunoprécipitation, Western Blot, immunofluorescence, test de clonogénicité, marquage béta-galactosidase, analyse du cycle cellulaire en FACS.

  • INSERM U844 Cellules Souches Mésenchymateuses, Environnement Articulaire et Immunothérapies de la PR - Assistante Ingénieur en Techniques Biologiques (5 mois, stage)

    2010 - 2010 Équipe de Florence Apparailly « Contrôle moléculaire des fonctions monocytaires dans l’arthrite »

    Identifier les microARNs associés à la polyarthrite rhumatoïde dans la perspective de développer de nouvelles stratégies thérapeutiques.

    Missions :
    - Recherche de miRNA par RT-qPCR dans des monocytes isolés de souris naïve VS souris arthritique.
    - Transfections de pré-miR, antagomir sur une lignée cellulaire murine de macrophage, puis dosage des cytokines secrétées sous stimulation LPS par ELISA.
    - Étude de biodistribution d’ARNi chez la souris avec différentes formulations du liposome cationique.
    - Étude des sous-populations de monocytes (Ly6C high, low) chez la souris naïve VS souris arthritique.

    Techniques utilisées :
    Culture cellulaire, transfections, extraction d’ARN, RT-qPCR, ELISA, expérimentation animale, isolement de monocytes et analyses FACS.

  • CNRS UMR 5237 Centre de Recherche de Biochimie Macromoléculaire - Technicienne de Recherche en Biologie (2 mois, stage)

    2009 - 2009 Équipe de Serge Roche « Tyrosine kinases & cancer »

    Missions :
    Valider biochimiquement par Western Blot les substrats associés à l’activité oncogénique de deux tyrosine kinases (Src et Yes) dans le cancer du côlon.

    Techniques utilisées :
    Culture cellulaire, immunoprécipitation, Western Blot.

  • UMR 1331 Toxicologie Alimentaire - Technicienne de Recherche en Biologie (3 mois, stage)

    2008 - 2008 Équipe d’Alain Bousquet-Mélou « Pharmacocinétique, Pharmacodynamie & Modélisation »

    Missions :
    - Étudier in vitro l’effet d’un antibiotique utilisé en médecine vétérinaire sur la viabilité des souches bactériennes d’Escherichia coli sensible et faiblement résistante à l’antibiotique et analyser l’émergence de résistance.
    - Caractériser l’influence de la dose de l'antibiotique utilisée et de la charge bactérienne testée sur l’apparition de ces mutations.

    Techniques utilisées :
    Cultures bactériennes, dénombrement bactérien, détermination CMI, PCR conventionnelle, séquençage.

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