Paris
Expérience Professionnelle
2014-2015. Spécialisation en Médecine Translationnelle
2012-2013 . Fonction : Chercheuse contractuelle (post doc)
Laboratoire de Recherche : Inserm Unité 1148 Laboratoire de recherche vasculaire translationnelle Recherche Biomédicale . Laboratoire de 100 personnes réparties en 3 équipes, Universités Paris 7, 5 et 13 : Paris et Bobigny
Objectif : Etude de la fonction des domaines intracellulaires du syndécanne-4 dans l’angiogenèse induite par la chimiokine RANTES/CCL5 in vivo chez la souris Nude.
Approches Expérimentales
Approche 1 : in vivo
Etude chez souris nude nécessitant la rédaction de protocoles expérimentaux, l' anesthésie, IP, IV, Chirurgie , prélèvement suivi des sacrifices en fin de protocole. implantation des pastilles de dextrane/pollulane etc...
2008-2011 . Fonction : Doctorante en physiologie et physiopathologie rénale
Laboratoire de Recherche : Inserm Unité 702 Laboratoire de recherche Laboratoire de recherche Remodelage et réparation du tissu rénal Recherche Biomédicale Laboratoire de 60 personnes réparties en 2 équipes : Inserm/ Universités Paris 6
Objectif : Le récepteur à domaine discoïdine de type I est un facteur clé dans la progression de la glomérulonéphrite à croissants in vivo chez la souris.
Approches Expérimentales
2006 - 2007 Chercheur stagiaire (DEA), Laboratoire «D'Immunologie», Inserm U 718, Université Paris 12 Sujet :« Etude de la répression de l'oncogène BCL2 par la Doxyxicline » (6 mois de cour et 6 mois de stage).
Compétences scientifiques
Biologie cellulaire et biochimie : culture cellulaire, immortalisation, immunoprécipitation, Western blot, cytométrie de flux, dosage de différentes enzymes lysosomales, immunocytochimie, transfection, infection lentivirale, immunohistochimie, dosage de luciférase, tests ELISA, dosages biochimiques (cholestérol, triglycérides, phospholipides), efflux et uptake de cholestérol (utilisation de molécules radiomarquées) .Etude de la signalisation apoptotique : tests de prolifération et de cytotoxicité, analyses morphologiques, analyse de l’activation des caspases (dosage enzymatique et Western blot), relargage du cytochrome c, quantification de la fragmentation de l’ADN par DAPI quantitatif Biochimie des lipides : extraction lipidique et séparation par chromatographie
Biologie moléculaire : purification d’acides nucléiques, vérification de la qualité de l’ARN par Agilent, électrophorèse, amplification (PCR classique et PCR en temps réel), Northern blot, Southern Blot, transformation bactérienne, clonage d’ADN, techniques de base de mise au point d’une souris KO.
Expérimentation animale et pharmacologie : obtention de MEFs, injections intrapéritonéale, sous-cutanée et intraveineuse, gavage, nécropsie, injection de cellules tumorales en orthotopique dans le poumon, le rein et le pancréas, sutures, imagerie in vivo (luminescence), ligature de la carotide (souris), du certificat d'expérimentation animale niveau I. IP, IV, UUO Chirurgie. Implantation des pastilles dextrane/pollulane. formation des post doc, Thèse, master et médecins (60 personnes).
FORMATIONS
2014-2015 Doctorat Santé Publique option Recherche Clinique en cour Université Paris 6
2014 Qualifiée Maître de Conférence en Biologie cellulaire -65-14265249366 Paris 6
2013 Doctorat en physiologie et physiopathologie rénale Paris 6 (Mention Très Honorable)
2008 Certificat d'expérimentation animal niveau 1
2007 Master de Modèles et Modélisation en Biologie Intégrative Paris 12
2004 D.U 3ème cycle de Biothérapie et culture cellulaire Paris 12
Distinction
Bourse d'Excellence de la Société de Néphrologie
Mes compétences :
Fibrosis
Western Blotting
Southern Blotting
PC Hardware
Hypertension
Cytométrie en flux
Cytom�trie en flux
Cytom?trie en flux
Recrutement
