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Daphné BOURGOIN

Lyon

Electionseuropéennes 2024

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En résumé

Domaines de compétences

Biologie Moléculaire : Extraction, purifications et électrophorèse d’acides nucléiques / Clonage / Transformation bactérienne / Southern Blot / Test sur l’expression de gènes / Puces à ADN / RT-PCR / Nested PCR / PCR quantitative / digital PCR/ Identification de type cellulaire par empreintes génétiques (RFLP – détection Immuno-fluorescente)

Bactériologie : Identification bactérienne / Transformation /Mutagenèse /Contrôles microbiologiques en agroalimentaire /Fermentation / CHEMSCAN

Immunologie : Tests ELISA /SDS page /Western Blot /Technique d’Ouchterlony / Electrosynérèse /Immunoélectrophorèse /réactions d’agglutination directe ou passive /Technique d’Immunofluorescence

Biochimie : Chromatographie d’échange d’ions, HPLC, CPG

Informatique : Pack Office /Internet /documentum /BLAST /Primer Express /Amplify /Vecteur NTI/ Image Quant

Langue : Bonnes notions en Anglais (lu et écrit)

Mes compétences :
Biologie moléculaire
Bactériologie
Biotechnologies

Entreprises

  • Bayer - Technicienne de laboratoire R&D

    Lyon 2016 - 2016 BAYER CROPSCIENCE - Département Biochimie Biotechnologie (Philippe PERRET)
    Travail sur la Rouille du Soja : caractérisation par les techniques de ddPCR, mise au point de PCR, Western Blot, clonage, Microbiologie.

  • Laboratoire ObvieLine - Technicienne de production

    Dardilly 2014 - 2016 Fabrication de dispositifs médicaux à base d’acide hyaluronique réticulé. Travail en Zone à atmosphère contrôlée (ZAC), production des lots de routine et de lots pilote, gestion et maîtrise des zones de fabrication. Gestion des stocks et des flux de fabrication interne. Gestion et maintenance des équipements.

  • Sanofi Pasteur - Technicienne de laboratoire contrôle qualité et développement

    Lyon 2012 - 2013 Travail en laboratoire (classé P2-P3) de Biologie moléculaire, Microbiologie dirigé par Nathalie FAURE-CHANEL et Valérie DETREZ- Plateforme Microbiologie ARD EU (Thierry BONNEVAY) à SANOFI PASTEUR (69)
    Réalisation de tests de routine dans un contexte GMP :
    - Dosage de l'ADN résiduels de cellules par qPCR
    - Recherche de cellules microbiennes viables par cytométrie en phase solide CHEMSCAN (Test de routine et Qualité performance phase 2)
    - Dénombrement de germes par filtration (BIOBURDEN), en surface et en profondeur.
    - Séquençage SANGER sur souches grippe

  • BAYER CROPSCIENCE - Technicienne de la Recherche

    Lyon 2009 - 2009 Département Plant Health (Benoit Hartmann).

    Travail sur les ARN interférents :
    Mise au point de Northern Blot marquage froid / Clonage

  • SANOFI PASTEUR - Technicienne de laboratoire contrôle Qualité et Développement

    Lyon 2005 - 2009 Technicienne contrôles qualité et développement dans le laboratoire (classé P2-P3) de Biologie moléculaire dirigé par Valérie DETREZ - Plateforme Microbiologie (Thierry BONNEVAY) à SANOFI PASTEUR (69)

    Tâches réalisées :
    - Développement et optimisation de techniques de qPCR
    - Mise au point d’un contrôle d’inactivation d’un virus par RT-qPCR et culture cellulaire
    - Réalisation de tests de routines dans un contexte GMP (qPCR, nested-PCR, test RFLP)
    - Rédaction de documents qualité avec le logiciel Documentum.
    - Participation à des groupes de travail (résolution de problèmes ponctuels sur des techniques déjà mis en place, test et mise en place d’une extraction universelle pour toutes les références ADN du laboratoire, mise en place d’un système de codification des références et réactifs critiques, etc.).
    - Responsable de zone

  • INSTITUT PASTEUR - Technicienne de la recherche

    Paris 2005 - 2005 Stage de Recherche fondamentale à l’Institut Pasteur de Paris dans l’Unité des Cyanobactéries.
    Etude de l'influence des facteurs environnementaux sur l’expression des gènes de Microcystis aeruginosa par la mise au point de méthodes de biologie moléculaire.

    Tâches réalisées :
    - Mise au point des conditions de culture de Microcystis aeruginosa
    - Comparaison de plusieurs méthodes d’extraction d’ARN
    - Test d’une méthode d’amplification d’ARN
    - Rétro transcription avec marquage chaud
    - Hybridation sur membrane ADN (puces à ADN)

  • Laboratoire d’Ecologie Microbienne - Technicienne de la recherche

    2004 - 2004 Stage au laboratoire d’Ecologie Microbienne dans l’Unité Rhizosphère dirigée par Yvan MOENNE LOCCOZ de l’Université Claude Bernard LYON I.

    Dans le cadre de ce stage, j'ai étudiée l’organisation de gènes symbiotiques dans une portion du génome d’une bactérie Azospirillum lipoferum 4VI qui favorise la croissance des plantes ; et j'ai recherché et étudié le gène acdS en réalisant un criblage d’une banque bactérienne.

    Tâcges réalisées :
    - Sélection des enzymes de restrictions qui permettront d’obtenir des fragments d’ADN d’une taille optimale pour séquencer.
    - clonage de gènes et culture de clones
    - gestion des bactéries.
    - Extraction de plasmide et d’insert ; purification d’ADN.
    - Tests de l’expression d’un gène de bactéries sur gélose et par PCR.

Formations

Pas de formation renseignée

Réseau

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