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Nathalie TAQUET

Courbevoie

En résumé

Je suis actuellement Team Manager à Galderma Nestlé Skin Health (Sophia Antipolis).

Au cours de ces dernières années, j'ai effectué :
- un DEUG de Biochimie, une Licence de Biologie des Populations et une Maîtrise de Biologie des Ecosystèmes à Paris VI,
- un DESS en Imagerie Biologique sur Strasbourg,
- une équivalence DEA en Pharmacologie,
- une thèse dans le laboratoire CNRS d'Innovation Thérapeutique à la faculté de pharmacie d'Illkirch,
- un premier post-doc dans l'équipe de Génétique et Moléculaire du Développement précoce du Système Nerveux chez les Diptères à l'Institut de Génétique et de Biologie Moléculaire et Cellulaire à Illkirch
- un deuxième post-doc à l'INRA de Sophia Antipolis dans l'équipe des Intéractions Biotiques et Santé Végétale
- un contrat d'ingénieur de Recherche à l'Institut de Biologie du Développement et du Cancer à la Faculté de Nice

Voici un résumé des compétences développées à Galderma :
- Management
- Gestion de projets avec des CRO
- Business process management (SIPOC, évaluation des KPI, Optimisation de Screening, Robotisation)
- Gestion de budgets
- Développement de nouveaux modèles
- Visualisation des données, implémentation de datamart et datawarehouse
- Prédictions PK
- Activités transverses

Mes compétences :
Biochimie
Biologie
Biologie moléculaire
Biologie moléculaire et cellulaire
Clonage
Culture
Culture cellulaire
Cytométrie
ELISA
Extraction
Extraction d'ARN
Immunologie
Microscopie
PCR
Pharmacologie
Protéines
QPCR
Recherche
Santé
Western blot
Cytométrie en Flux
Ingénierie
Communication
Informatique
Enseignement
Gestion de projet

Entreprises

  • Galderma - Team Leader

    Courbevoie 2012 - maintenant Sujet de Recherche : Etude early-ADMET de composés chimiques.

  • CNRS - Post-doctorat, Ingénieur de Recherche

    Paris 2010 - 2011 Sujet de Recherche : Etude de la protéine Rac1, petites protéines G chez la levure pathogène Candida albicans

    Techniques : qPCR (SYBR Green), clonage, microscopie à champ large et confocale (FRAP, multimarquage, déconvolution, quantification), spinning disc

  • INRA - Post-Doctorat, Ingénieur de Recherche

    Paris 2008 - 2010 Sujet de Recherche : Etude des récepteurs homologues chez les insectes des PXR/CAR et AhR. Rôle dans l'induction des P450 et les interactions insectes/plantes et insectes/xénobiotiques

    Techniques : extraction d'ARN et de protéines, clonage, qPCR (SYBR Green), puces à ADN, siRNA, Design de primers, Gateway, séquençage par RACE, microscopie confocale, manipulations sur lepidoptères, cytométrie en flux (cycle cellulaire), western blot, culture cellulaire.

  • Institut de Génétique et de Biologie Moléculaire et Cellulaire - Post-doctorat

    2007 - 2008 Sujet de Recherche : Régulation de l’expression de pannier par la voie de signalisation de Decapentaplegic chez la Drosophile: un modèle d’étude de cancers chez l’Homme

    Techniques : mutagénèse par double PCR, minipréparation d'ADN et clonage, manipulations de drosophiles (dissections de disques imaginaux), hybridation in situ, croisements génétiques.

  • Université Louis Pasteur - Attaché Temporaire d'Enseignement et de Recherche

    2006 - 2008 Enseignements en Biochimie-Biologie Moléculaire-Bioinformatique :
    - Travaux Pratiques de Biotechnologie (Biochimie, Biologie Moléculaire) des 3ièmes années (120h TP),
    - Travaux Dirigés de Biochimie des 1ières années (72h TD) et des 3ièmes années (12h TD),
    - Travaux Dirigés de Bioinformatique des 2ièmes années (16h TD).

  • Faculté de Pharmacie CNRS Illkirch - Doctorante en Sciences de la Vie et de la Santé

    2005 - 2007 Sujet de Recherche : Étude de l'expression des Récepteurs Couplés aux Protéines G dans la maladie de Crohn. Recherche de biomarqueurs et de cibles thérapeutiques.

    Techniques : extraction d’ARN et de protéines, qPCR (TaqMan), Western Blot, test ELISA, cytométrie en flux, microscopie confocale, culture cellulaire.

  • Faculté de pharmacie CNRS Illkirch - Techniciennne de la plateforme criblage de l'IFR85

    2004 - 2005 Sujet de recherche : Identification de composés à activité anti-inflammatoire grâce au criblage de deux chimiothèques (3500 composés).

    Techniques : test ELISA, microscopie confocale, cytométrie en flux, PCR quantitative en temps réel, immunomarquages, expérimentation animale.

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