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Université de Poitiers
- Enseignement (TD et TP)
Poitiers
2016 - 2016
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French Sciences Publishing Group
- Edition
2015 - maintenant
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Collège Sacré Coeur (Jaunay-clan)
- Enseignement
2014 - 2016
Enseignement de la SVT niveau 6ème, 5ème, 4ème et 3ème.
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lycée Notre-Dame de La Recouvrance (Saintes)
- Enseignante
2014 - 2014
Enseignement de la biotechnologie et physiopathologie niveau terminale ST2S
Enseignement de la biologie niveau seconde
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Collège Jeanne d'Arc (Saintes)
- Enseignante
2014 - 2014
Enseignement de la SVT niveau 4ème et 3ème.
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EDEN Recherche et Développement
- Directrice scientifique
2012 - 2015
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INSERM / Laboratoire Velay
- Doctorante /chercheur en biologie cellulaire et moléculaire
2008 - 2011
thése en financement CIFRE réalisée au sein d'un laboratoire INSERM, à Poitiers, dont les sujets de recherche sont axés sur la transplantation rénale. Mes travaux ont été effectués en collaboration avec le LABORATOIRE VELAY et m'ont donc également permis de travailler sur des projets de recherche appliquée, dans le domaine du complément alimentaire.
Intitulé de la thèse: De la recherche fondamentale (Na,K-ATPase et DHA) jusqu’aux essais cliniques en passant par les plantes (Desmodium adscendens et une infusion de plantes) dans le cadre de la réglementation européenne du complément alimentaire.
Thèse soutenue le 16 décembre 2011
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Texas Tech University (Lubbock, TEXAS)
- Assistant de recherche
2007 - 2007
apprentissage de l'utilisation de la microscopie confocale
apprentissage de différentes techniques de cultures cellulaire
Immunicytochimie
Western blot
formation théorique à l'utilisation de la radioactivité
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CNRS
- Stagiaire de master 2
Paris
2006 - 2006
J’ai réalisé mon stage de M2 recherche sous la direction du Maître de conférence Véronique Ladevèze au sein du Laboratoire de Génétique Moléculaire de l’Adressage et de la Signalisation(CNRS UMR 6187 de l'université de Poitiers). Mon travail portait sur une protéine suppresseur de tumeur, la protéine ARF. Le projet de recherche était de comparer différentes ARF (primates et humaine) afin de mieux comprendre à long terme les mécanismes de suppression de tumeurs et de définir les différents rôles de ARF dans le cycle cellulaire et les cancers. Il peut se décliner en trois parties. La première concerne la détermination de la séquence chez un prosimien afin de déterminer les variations d’acides aminés côté C-terminal. La seconde partie aborde l’étude de la variabilité de la localisation de ARF dans un nouveau modèle cellulaire, cette dernière peut être en effet soit nucléolaire (sous forme de réserve), soit nucléoplasmique (forme active) (Lee et al., 2005), ceci afin de visualiser certaines interactions non mises en évidence dans le laboratoire. De plus comme ARF peut être ubiquitinylée et dégradée par le protéasome, l'effet d'un inhibiteur de ce dernier (le MG 132) a été étudié. Pour cela, différentes transfections ont été réalisées avec ou sans MG 132, et par microscopie confocale, nous avons mis en évidence dans les deux cas amplification du phénomène de redistribution. Toutefois, ces résultats certes intéressants sont limités par un faible taux de transfection et une mortalité des cellules élevée. De ce fait, une seconde approche a été réalisée concernant la purification des différentes protéines ARF afin de visualiser les différents complexes in vitro dont certains n’avait, jusque là pus être mis en évidence au laboratoire. Dans ce but, un milieu particulier auto-inductible (Studier, 2005), a été testé et comparé au milieu d'induction classique par l'IPTG.
Au cours de ce stage j’ai pu acquérir les techniques suivantes : PCR, Séquençage, Culture cellulaire, Transfection des cellules par les méthodes Fugène et Calcium Phosphate, Extraction de plasmides, Mutagenèse dirigée, Microscopie confocale, culture de bactéries sur différents milieux, purification de protéines sur billes de zinc (pull down), western blot.
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CNRS
- Stagiaire de master1
Paris
2005 - 2005
Le stage effectué dans le cadre de ma première année de master portait sur l’expression de la protéine GAS6 et de la protéine S dans la rétine de rat en fonction du rythme nycthéméral. Il a été réalisé sous la direction du Pr Omar Benzakour au sein du laboratoire de Neurobiologie cellulaire (CNRS UMR 6187 de l'université de Poitiers).
Certaines études ont mis en évidence des mutations du gène MER, codant pour le récepteur tyrosine Kinase de la protéine GAS6 (Growth Arest Specific gene 6). Les mutations observées chez le rat RCS (Royal College Surgeon) et chez l’homme sont à l’origine de dégénérescences rétiniennes due à un défaut de phagocytose des segments externes des photorécepteurs par l’épithélium pigmentaire. La protéine γcarboxylée GAS6, homologue structurale de la protéine S (facteur anticoagulant) aurait donc un rôle prépondérant dans la physiopathologie de la rétine La régulation circadienne de la phagocytose des photorécepteurs ayant déjà été démontrée, il a semblé important de déterminer les variations possibles de la protéine GAS6 et de la protéine S en fonction du rythme nycthéméral. Pour cela des analyses immunohistochimiques de coupes de rétines prélevées lors du shedding (renouvellement de photorécepteurs) ou lors du point opposé au shedding, ainsi que des prélèvements sanguins ont été effectués sur des rat Wistar. Les résultats obtenus ont montré une variation du niveau d’expression de la protéine S, et à un moindre degré une variation de la protéine GAS6.
Ce stage m’a permis d’acquérir les techniques suivantes : Prélèvement de sang et de tissus sur des rats, préparation des tissus, coupes au microtome, immunohistochimie, photographies des coupes et quantification du marquage.
